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Revista de Ciencias Ambientales (Trop J Environ Sci)
(Enero-Junio, 2020). e-ISSN: 2215-3896. Vol 54(1)
DOI: https://doi.org/10.15359/rca.54-1.3
Open Acces: www.revistas.una.ac.cr/ambientales
e-Mail: revista.ambientales@una.cr
Cedeño-Fonseca M., Flores-Leitón J., Quesada-Roman A. y Flores R.


Inventario florístico en un bosque amenazado por la expansión agrícola en la reserva del Centro Turístico Los Chocuacos, Costa Rica

Floristic Inventory in a Forest Threatened by Agricultural Expansion in the Reserve of Centro Turístico Los Chocuacos, Costa Rica

Marco Cedeño-Fonseca1, José Miguel Flores-Leitón2, Adolfo Quesada-Román3, Rodolfo Flores4

[Recibido: 28 de mayo 2019, Aceptado: 16 de setiembre 2019, Corregido: 25 de octubre 2019, Publicado: 1 de enero 2020]

Resumen

[Introducción]: La expansión de monocultivos de palma africana (Elaeis guineensis) y piña (Ananas comosus), en Costa Rica, ha degradado en forma progresiva el entorno natural del país, particularmente la región del distrito de Potrero Grande de Buenos Aires. [Objetivo]: Se buscó evidenciar la importancia de la conservación en la reserva del Centro Turístico Los Chocuacos (CTLC), que conserva un mosaico de bosque, entre secundario y primario, de aproximadamente 30 años y la cual, está amenazada por el crecimiento de monocultivos. [Metodología]: En un área de 25 ha, se realizó un inventario florístico mediante recorridos aleatorios en el borde del bosque, los senderos, las áreas sin senderos, las quebradas y nacientes, donde se recolectaron especímenes botánicos en estado reproductivo, que fueron herborizados y depositados en el Herbario Luis A. Fournier Origgi de la Universidad de Costa Rica. [Resultados]: Se obtuvo una riqueza florística de 75 familias, 219 géneros y 266 especies. Se encontró un nuevo registro para el país del arbusto Eugenia veraguensis y una especie del género Aristolochia que en la actualidad está siendo descrita como una nueva especie para la ciencia. La forma de vida más representativa es árbol, con hábitat, principalmente presente terrestre. Las familias Fabaceae, Rubiaceae y Malvaceae fueron las que poseen mayor riqueza de especies. [Conclusiones]: Este estudio evidencia la importancia de los inventarios florísticos para aumentar el conocimiento de especies presentes en zonas poco estudiadas del trópico que están siendo afectadas por el desordenado cambio en el uso de la tierra.

Palabras claves: Cordillera de Talamanca; fila costeña; flora vascular; río Grande de Térraba; valle de Coto Brus.

Abstract

[Introduction]: The expansion of African palm (Elaeis guineensis) and pineapple (Ananas comosus) monocultures in Costa Rica has progressively degraded the natural environment of the country, standing out the region of the Potrero Grande district of Buenos Aires. [Objective]: This study aims to show the importance of conservation in the Centro Turistico Los Chocuacos (CTLC) reserve, which is a threatened area, and that conserves a forest, between secondary and primary, of approximately 30 years. [Methodology]: In an area of 61.77 acres (25 hectares), a floristic inventory was performed by random walks along the forest edge, trails, river, waters springs, and areas not crossed by trails. The botanical specimens were collected in a reproductive state, botanized and deposited in the Herbarium Luis A. Fournier Origgi of the University of Costa Rica. [Results]: The CTLC reserve has a floristic wealth of 75 families, 219 genera, and 266 species. The results yield important data, such as a new record for Costa Rica, Eugenia veraguensis, and a species of the genus Aristolochia, which is currently being described as a new species for science. The most representative life form is the tree, and the habit is mostly terrestrial. The Fabaceae, Rubiaceae, and Malvaceae families were the most representative in the study area. [Conclusions]: The study highlights the importance of floristic inventories to increase knowledge of species present in poorly studied regions of the tropics that are also being affected by the disorderly land-use change.

Keywords: Coto Brus Valley; Fila Costeña; Talamanca mountain range; Terraba river; vascular flora.

1.Introducción

El aumento masivo en la expansión de monocultivos como la palma africana (Elaeis guineensis) y la piña (Ananas comosus) tienen un papel importante en la degradación ambiental producida por la deforestación. Este inicia en el continente asiático y se expande a regiones latinoamericanas (Gregory & Ingram, 2014). Según la Food and Agriculture Organization (FAO, 2016), la producción de palma africana en Latinoamérica se ha duplicado desde el año 2000, donde Colombia, Ecuador y Honduras son los principales productores, Costa Rica está muy cerca de ser uno de los principales productores en Centroamérica junto con Honduras (Furumo & Mitchell, 2017). Las implicaciones ambientales por los monocultivos como la palma africana y la piña son múltiples, especialmente los efectos negativos por el uso de agroquímicos que contribuyen al calentamiento global, el uso excesivo del recurso hídrico y la fragmentación de corredores biológicos (Acuña, 2006; Ávila-Romero & Albuquerque, ٢٠١٨; Echeverría-Sáenz et al., 2012). En el caso de Costa Rica, en la región del Pacífico sur ambos monocultivos han crecido exponencialmente y los paisajes agrícolas se han apoderado de una región con alta biodiversidad y riqueza del país (Acuña-Piedra & Quesada-Román, 2017; Beegs & Moore, 2013).

El valle de Coto Brus, localizado en la región del Pacífico sur costarricense, está siendo invadido por la expansión del monocultivo de palma africana y de piña y, actualmente, se desconoce la diversidad florística que resguardan los remanentes de bosque en esta región, los cuales carecen de estudios florísticos, especialmente los bosques localizados en la parte baja del valle (Grayum et al., 2004). Ubicado en la cuenca del río Grande de Térraba, el Centro Turístico Los Chocuacos conserva 25 hectáreas de bosque húmedo tropical (Bolaños & Watson, 2005; Holdridge, 1987), con una edad aproximada de 30 años. El sector de menor elevación en la reserva consiste en una laguna natural y vegetación a su alrededor, que anteriormente estuvo rodeada por potreros. En el año 1989, los propietarios decidieron desarrollar un proyecto turístico que englobara actividades recreativas para los grupos locales: avistamiento de avifauna y la adopción de un modelo de conservación que permitió la regeneración natural del bosque.

En Costa Rica, los bosques húmedos tropicales se ubican aproximadamente en la parte sur de la vertiente Caribe, en el norte del país en Upala, San Carlos y Los Chiles, en la vertiente Pacífica, en la península de Nicoya y en el sur, sobresale Buenos Aires, de 0500 metros sobre el nivel del mar (Bolaños & Watson, 2005). No obstante, se considera que varias especies características del patrón florístico de la península de Osa ascienden hasta los bosques en la región del valle de Coto Brus (Zamora et al., 2004). Esta región, por su localización geográfica, funciona como puente biológico entre la flora y fauna de Norteamérica y Sudamérica (Arauz & Arias, 2016), manteniendo procesos biológicos y evolutivos de la flora del valle (Zamora et al., 2004). Sin embargo, son ecosistemas que no se han documentado de forma exhaustiva y se encuentran dentro de las áreas más alteradas por la expansión agropecuaria de monocultivos tales como piña y palma aceitera.

La importancia de estudios biológicos en las áreas naturales protegidas, tanto estatales como de capital privado, radica en la generación de información científica básica para la comprensión de los ecosistemas y la implementación de medidas adecuadas para su conservación y la de sus especies (Pérez, 2014). Por lo tanto, esta investigación pretende elaborar un estudio florístico para la documentación de la flora de la reserva del Centro Turístico Los Chocuacos, el cual se pretende que permita caracterizar la vegetación del valle de Coto Brus.

2.Metodología

2.1Área de estudio

La reserva privada del CTLC está localizada al sureste de Costa Rica, específicamente en el flanco oeste del Parque Internacional de la Amistad, Cordillera de Talamanca, cuenca del río Grande de Térraba, entre las coordenadas geográficas 8°57’52’’ N, 83°10’26’’ W y a una elevación entre los 250–300 m. Conserva un aproximado de 25 hectáreas de un mosaico entre bosque primario y secundario húmedo tropical (Bolaños & Watson, 2000) (Figura 1 y 2).

Figura 1. Localización de la laguna Vueltas en la reserva del CTLC.
Figure 1. Location of Vueltas lagoon at the reserve of CTLC.

La laguna Chocuacos o laguna Vueltas (Figura 1) se encuentra en la cuenca del río Limón, que pertenece regionalmente a la cuenca del río Térraba. Aparentemente, se forma al asentarse detrás de un bloque deslizante, por lo que sus aguas son turbias y cálidas. La laguna es poco profunda con elevados niveles de oxígeno y donde los análisis palinológicos e isotópicos indican cambios tardíos del oloceno en la vegetación y la incidencia de incendios como resultado de actividades humanas que documentan la tala extensa de bosques y el cultivo de maíz en alrededor de 1 100 años cal AP. El carbón vegetal y el maíz desaparecen del récord alrededor de 450 años cal. AP, lo que indica el abandono del sitio después de la Conquista, y una recuperación del bosque húmedo siempre verde de las tierras bajas del Pacífico sur (Horn & Haberyan, 2016).

2.2Recopilación de datos

Entre los meses de noviembre de 2017 y marzo del 2018, se efectuaron numerosos recorridos aleatorios por toda el área de estudio donde se recolectaron especímenes botánicos en estado reproductivo (flor y fruto). Los recorridos aleatorios siguen el método de Filgueiras et al. (1994), e incluyen el borde del bosque, senderos, quebradas, nacientes y áreas no atravesadas por senderos. Los ejemplares botánicos recolectados fueron herborizados y depositados en el Herbario Luis A. Fournier Origgi de la Universidad de Costa Rica (bajo el acrónimo USJ). Para la identificación, se consultaron los herbarios del Museo Nacional de Costa Rica (CR), Dr. Luis A. Fournier Origgi (USJ) y las versiones publicadas del Manual de plantas para Costa Rica (Hammel et al., 2003a, 2003b, 2004, 2010, 2014, 2015).

2.3Análisis de datos

Las especies se identificaron alfabéticamente por familia, género y especie en la categoría Spermatophyta (plantas con semilla) y Pteridophyta (Apéndice 1). La taxonomía de este grupo de plantas se basa en la clasificación aceptada por la base de datos TRÓPICOS (Trópicos, 2019), la cual sigue la clasificación del APG IV para angiospermas (Chase et al., 2016); en el caso de Lycophyta y Pteridophyta, siguen la clasificación de Christenhusz et al., (2011). Las especies se clasificaron según su hábitat en plantas terrestres (T), epífitas (Ep) y hemi-epífitas (H-ep) y según su forma de vida en hierba (H), árbol (A) arbusto (Ar) y liana (L), con la metodología de Nivia y Cascante (2008). Se determinó la cantidad de familias, géneros y especies para la categoría Spermatophyta y Pteridophyta, se estableció el origen o procedencia de las especies de acuerdo con Jiménez et al., (2016) en endémica binacional (ENB), introducido y naturalizado en Costa Rica (IN) e introducido, pero no naturalizado (INN).

Figura 2. Reserva privada del Centro Turístico Los Chocuacos. (A) Fotografía de los potreros alrededores en la laguna en el año 1999 (Foto fuente desconocida), (B) Vista aérea de la reserva en el año 2018 (Foto por Esteban Arias) y (C) Fotografía del bosque alrededor de la laguna en el año 2019 (Foto por Marco Cedeño).
Figure 2. Private reserve of the Los Chocuacos Tourist Complex. (A) Photograph of the surrounding pastures in the Lagoon in 1999 (Photo unknown source), (B) Aerial view of the reserve in 2018 (Photo by Esteban Arias) and (C) Photograph of the forest around the Lagoon in the year 2019 (Photo by Marco Cedeño).

3.Resultados

El CTLC conserva una riqueza florística de 75 familias, 219 géneros y 266 especies de plantas vasculares. Con base en la forma de vida de las plantas, los árboles son el grupo más representativo con 110 especies, seguido por las hierbas con 65 especies, arbustos con 62 especies y lianas con 28 especies (Apéndice 1; Figura 3). El hábito terrestre es el más diverso con 235 especies, seguido por el epifito con 21 especies, el hemi-epífito con 7 especies y el acuático con 3 especies (Figura 4). Las familias más representativas dentro de la reserva son Fabaceae con 22 géneros y 31 especies, Rubiaceae con 13 géneros y 14 especies, Malvaceae con 14 géneros y 14 especies y Araceae con 7 géneros y 17 especies (Figura 5).

Figura 3. Forma de vida de la flora vascular de la reserva del CTLC (A=Árbol, Ar=Arbusto, H=Hierba, L=Liana).
Figure 3. Lifestyle of the vascular flora of the CTLC reserve (A=Tree, Ar=Shrub, H=Grass, L=Liana).

Figura 4. Hábito de la flora vascular en la reserva del CTLC (T=Terrestre, Ep=Epífito, H-ep=Hemi-epífita, Ac=Acuático).
Figure 4. Habit of the vascular flora in the CTLC reserve (T=Terrestrial, Ep=Epiphyte, H-ep=Hemi-epiphyte, Ac=Aquatic).

Figura 5. Familias representativas en la flora vascular en la Reserva del CTLC.
Figure 5. Representative families in the vascular flora in the CTLC Reserve.

Se recolectó una especie del género Aristolochia (Aristolochiaceae), la cual corresponde a una especie nueva para la ciencia que actualmente se está describiendo (J. Esteban Jiménez, commun. person.). Esta planta fue recolectada por primera vez en la península de Osa; no obstante, en la reserva del CTLC se encontró la segunda población conocida de esta entidad, que consta de cuatro individuos adultos (M. Cedeño 1348). Además, se halló una especie considerada como un nuevo registro para Costa Rica: Eugenia veraguensis (Myrtaceae), anteriormente conocida solo para Panamá, identificada por el botánico panameño Rodolfo Flores Jiménez, quien actualmente trabaja la familia Myrtaceae para Centroamérica, cuyo registro se hace oficial para el país mediante este artículo.

A nivel taxonómico, la familia Fabaceae es la más dominante en especies. Algunos grupos representativos de esta zona son: Astronium graveolens, Anacardium excelsum (Anacardiaceae), Xylopia aromatica, Xylopia frutescens (Annonaceae), Cochlospermum vittifolim (Bixaceae), Brosimum alicastrum, Brosimum costaricanum, Ficus insipida, Castilla tunu (Moraceae), Calophyllum brasiliense (Calophyllaceae), Andira inermis, Albizia guachapele, Leptolobium panamense, Cassia moschata, Copaifera aromatica, Dalbergia retusa, Diphysa americana, Enterolobium cyclocarpum, Platymiscium pinnatum (Fabaceae), Pseudobombax septenatum, Bombacopsis sessilis, Ceiba pentandra (Malvaceae), Psidium guineense (Myrtaceae), Coccoloba guanacastensis, Triplaris melaenodedron (Polygonaceae), y Chrysophyllum cainito (Sapotaceae).

Se encontraron cuatro especies endémicas binacionales entre Costa Rica y Panamá las cuales son: Pitcairnia halophila (Bromeliaceae), Palmorchis powellii (Orchidaceae), Inga jimenezii (Fabaceae), mientras que la Coccoloba guanacastensis (Polygonaceae) es endémica entre Costa Rica y Nicaragua. Otro hallazgo de importancia es la alta abundancia observada de la especie Pera oppositifolia (Peraceae), la cual es un árbol conocido de escasas poblaciones naturales en el país y distribuido en Costa Rica solo en la cuenca del río Térraba en la región de Buenos Aires.

Cabe resaltar que la vegetación presente en esta reserva interesantemente posee especies características tanto del bosque húmedo tropical como del bosque seco tropical, las cuales poseen importancia de conservación y como especies ornamentales (Figuras 6 y 7).

Figura 6. Algunas especies documentadas en la reserva del CTLC: (A) Bletia purpurea; (B) Palmorchis powellii; (C-D) Vanilla pompona; (E) Cydista potosina; (F) Melochia nodiflora; (G) Passiflora coriacea; (H-I) Paullinia turbacensis. (Fotos: Marco Cedeño).
Figure 6. Some species documented in the CTLC reserve: (A) Bletia purpurea; (B) Palmorchis powellii; (C-D) Vanilla pompona; (E) Cydista potosina; (F) Melochia nodiflora; (G) Passiflora coriacea; (H-I) Paullinia turbacensis. (Photos: Marco Cedeño).

Figura 7. Plantas de importancia ornamental en la reserva del CTLC: (A) Handroanthus impetiginosa (Foto: Nancy López); (B) Handroanthus ochracea (Foto: Nancy López); (C) Cochlospermum vitifolium (Foto: Marco Cedeño); (D) Schizolobium parahyba (Foto: Marco Cedeño); (E) Miconia impetiolaris (Foto: Marco Cedeño); (F) Lasianthea fruticosa (Foto: Marco Cedeño).
Figure 7. Plants of ornamental importance in the CTLC reserve: (A) Handroanthus impetiginosa (Photo: Nancy López); (B) Handroanthus ochracea (Photo: Nancy López); (C) Cochlospermum vitifolium (Photo: Marco Cedeño); (D) Schizolobium parahyba (Photo: Marco Cedeño); (E) Miconia impetiolaris (Photo: Marco Cedeño); (F) Lasianthea fruticosa (Photo: Marco Cedeño).

3.1Eugenia veraguensis, nuevo registro para la flora arborescente de Costa Rica

La especie Eugenia veraguensis pertenece a la familia Myrtaceae, la cual está constituida por árboles y arbustos hermafroditas, con hojas usualmente opuestas y aromáticas, y la corteza exfoliante en placas irregulares o rectangulares (Barrie et al., 2007; Flores et al., 2016). Crecen en áreas abiertas, bosques secundarios y primarios en ambas vertientes del país. En Costa Rica la familia Myrtaceae está representada por 14 géneros y 88 especies, el género Eugenia comprende 50 especies de árboles y arbustos hermafroditas, los cuales se distribuyen 02800 m (Barrie et al., 2007; Flores et al., 2016).

Eugenia veraguensis Rod. Flores & A. Ibáñez. Tipo: Panamá: Veraguas: Parque Nac. Coiba. Borde costero en el área de Las Salinas. Sur del sendero Los Pozos. 7º26’7.6”N 81º43’42.9”W, 5 m, 20 Apr 2008, fl., C. Galdames 6098, C. Vasquez, A. Ibáñez & F. Hernández (holotype, PMA!) (Figura 8).

Nombre común en Costa Rica: Sierrita o guayabo macho.

Distribución y hábitat: De Costa Rica y Panamá. En Costa Rica se localiza en el sur de la vertiente pacífica, específicamente en los cantones de Osa y Buenos Aires, cerca de la frontera con Panamá. Crece principalmente en la parte interna de los bosques primarios o secundarios, en agregaciones de 4-35 individuos, en suelos rocosos, márgenes de quebradas y en pendientes de hasta 65 °. La época de floración se observó en febrero y marzo, los frutos en abril y mayo.

Usos: Debido a su irregularidad en tallos y ramas, localmente se utilizan para hacer los látigos (tajonas) para los vaqueros que usan esta herramienta en sus fincas de ganado y en cabalgatas. También, en algunas fincas ganaderas utilizan los tallos más redondos y erectos para elaborar los chuzos que usan como guía para los bueyes. Por otra parte, los agricultores de frijol utilizan los tallos de los individuos más altos (>1.3 m) para golpear los cúmulos que agrupan sobre lonas y hacer que las vainas secas en la planta liberen los granos.

Material estudiado: Costa Rica. Puntarenas, Buenos Aires, Potrero Grande. Finca de Benito Cedeño. Bosque húmedo tropical, 21 febrero 2015, 73 m, M. Cedeño 772. Puntarenas, Buenos Aires, Potrero Grande. Centro Turístico Los Chocuacos. Bosque húmedo tropical, 21 febrero 2015, 73 m, M. Cedeño 1349.

Figura 8. Eugenia veraguensis Rod. Flores & A. Ibáñez., nuevo registro para la flora costarricense. (A) Ramas laterales con flores blancas, (B) Flores con pétalos blancos y estilo rosado, (C) Frutos con manchas moradas, (D) Vista del envés y frutos sin manchas moradas. (M. Cedeño 773).
Figure 8. Eugenia veraguensis Rod. Flores & A. Ibáñez., New registry for Costa Rican flora. (A) Side branches with white flowers, (B) Flowers with white petals and pink style, (C) Fruits with purple spots, (D) view of underside and fruits without purple spots. (M. Cedeño 773).

4.Discusión y conclusiones

Las derivaciones del muestreo florístico en la reserva evidencian el valor de estos estudios en áreas de alta vulnerabilidad por expansión agrícola, como la zona sur de Costa Rica, una de las regiones con mayores tasas de deforestación entre las décadas de 1960 y 1980 (Quesada-Román, 2013; Quesada-Román & Díaz, 2019; Quesada-Román & Mora, 2017; Zahawi et al., 2015). Estos estudios exponen la importancia de conservar los bosques en su estado natural y contribuyen a mitigar el faltante de información sobre la diversidad de especies que contienen estas regiones. De no ser por estas investigaciones, priorizar el correcto manejo de estos bosques en relación con los ejemplares que son albergados, aumentaría en complejidad, especialmente ante la amenaza de la disminución considerable de poblaciones a nivel mundial (Prina & Alonso, 2002).

La manutención de los bosques de esta región sur del país se ve limitada por la expansión de los monocultivos que afectan el dinamismo natural de los corredores biológicos de la zona y destruyen los ecosistemas naturales. A su vez, permite resaltar la importancia del estudio realizado en el CTLC, evidenciando la regeneración del bosque y robusteciendo su valor al sobresalir la presencia de una especie de Aristolochia nueva para la ciencia y el hallazgo de Eugenia veraguensis (Myrtaceae) como nuevo registro para Costa Rica. A pesar de que el área de estudio es pequeña, estos resultados realzan la alta importancia biológica que en ella se conserva, pues es capaz de albergar especies aún desconocidas y amenazadas por la expansión de los monocultivos y la fragmentación de los bosques.

Cabe resaltar la vitalidad del turismo como herramienta de conservación, especialmente desde la década de 1980 a nivel nacional (Kappelle, 2016). El incremento de la actividad turística en el área de estudio ha propiciado un manejo eficiente de los recursos y una regeneración natural progresiva que ha permitido acrecentar su actividad biológica. La conservación del medio ambiente en Costa Rica como atractivo turístico es un punto a favor en la justificación de la protección del entorno natural. Por ello, desde la perspectiva del modelo sostenible, la valoración de los pilares del desarrollo sostenible es ineludible para evitar la degeneración de los espacios naturales para el futuro (Mok, 2005).

Los resultados obtenidos exponen una ventana de oportunidades sobre la importancia biológica y económica que proyectos sostenibles como el CTLC pueden propiciar en comunidades rurales inmersas en problemáticas ambientales, con el fin de evitar pérdidas biológicas irremediables en zonas boscosas vulnerables de Costa Rica y los trópicos. Esta reserva, en corto tiempo, puede sufrir el impacto de la expansión agrícola de monocultivos como la piña y la palma africana aceitera. Por lo tanto, resaltar su importancia en la conservación de flora y fauna funge como una herramienta para toma medidas de protección.

5.Ética y conflicto de intereses

Las personas autoras declaran que han cumplido totalmente con todos los requisitos éticos y legales pertinentes, tanto durante el estudio como en la producción del manuscrito; que no hay conflictos de intereses de ningún tipo; que todas las fuentes financieras se mencionan completa y claramente en la sección de agradecimientos; y que están totalmente de acuerdo con la versión final editada del artículo.

6.Agradecimientos

Agradecemos a Cecilia Mora, Karina López, Marco López y Nancy López, propietarios del Centro Turístico Los Chocuacos, por su apoyo en esta investigación. También agradecemos a Isler Chinchilla, Adam Karremans, Esteban Jiménez y Gustavo Rojas por su ayuda en la identificación de diferentes grupos de plantas. A Benito Cedeño Morales y José Luís Leiva por su aporte en el uso doméstico de Eugenia veraguensis. A los revisores del manuscrito por sus aportes en la mejora del documento.

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8.Apéndices

Apéndice 1. Lista de plantas vasculares presentes en la reserva del CTLC. Forma de vida: Árbol (A), arbusto (Ar), hierba (H), liana (L). Endémica de Costa Rica (EN), endémica binacional (ENB), introducido naturalizado (IN), introducido, pero no naturalizado (INN). Hábitat: terrestre (T), epífitas (Ep), hemiepífita (H-ep), y acuática (Ac).
Appendix 1. List of vascular plants present in the CTLC reserve. Lifestyle: Tree (A), shrub (Ar), grass (H), liana (L). Endemic to Costa Rica (EN), bi-national endemic (ENB), introduced naturalized (IN), introduced, but not naturalized (INN). Habitat: terrestrial (T), epiphytes (Ep), hemiepiphyte (H-ep), and aquatic (Ac).

Taxones

Forma vida/Hábitat

PTERIDOPHYTA

 

Anemiaceae

 

Anemia phyllitidis (L.) Sw.

T/H

SPERMATOPHYTA

 

ANGIOSPERMAE

 

Amarantaceae

 

Chamissoa altissima (Jacq.) Kunth

T/H

Anacardiaceae

 

Anacardium excelsum (Bertero & Balb. ex Kunth) Skeels

T/A

Astronium graveolens Jacq.

T/A

Mangifera indica L.IN

T/A

Spondias radlkoferi Donn. Sm.

T/A

Annonaceae

 

Annona purpurea Moc. & Sessé ex Dunal

T/A

Unonopsis pittieri Saff. ex Standl.

T/A

Xylopia aromatica (Lam.) Mart.

T/Ar

Xylopia frutescens Aubl.

T/A

Apocynaceae

 

Asclepias curassavica L.

T/Ar

Plumeria rubra L.

T/A

Rhabdadenia biflora (Jacq.) Müll. Arg.

T/L

Tabernaemontana donnell-smithii Rose

T/A

Thevetia peruviana (Pers.) K. Schum.IN

  T/A

Araceae

T/A

Alocasia macrorhizos G. DonIN

T/H

Anthurium acutifolium Engl.

T/H

Anthurium clavigerum Poepp.

Ep/H

Anthurium cubense Engl.

Ep/H

Anthurium gracile (Rudge) Schott

Ep/H

Anthurium salvinii Hemsl.

Ep/H

Anthurium watermaliense hort. ex L.H. Bailey & Nash

T/H

Dieffenbachia tonduzii Croat & Grayum

T/H

Monstera adansonii Schott

Ep/H

Philodendron hederaceum (Jacq.) Schott

H-ep/H

Philodendron popenoei Standl. & Steyerm.

H-ep/H

Philodendron sagittifolium Liebm.

H-ep/H

Philodendron wilburii Croat & GrayumENB

H-ep/H

Pistia stratiotes L.

Ac/H

Rhodospatha wendlandii Schott

H-ep/H

Spathiphyllum phryniifolium Schott

T/H

Syngonium laterinervium CroatENB

H-ep/H

Araliaceae

 

Dendropanax arboreum (L.) Decne. & Planch.

T/A

Schefflera morototoni (Aubl.) Maguire, Steyerm. & Frodin

T/A

Arecaceae

 

Acrocomia aculeata (Jacq.) Lodd. ex Mart.

T/A

Attalea butyracea (Mutis ex L. f.) Wess. Boer

T/A

Chamaedorea tepejilote Liebm.

T/H

Cryosophila guagara P. H. AllenENB

T/H

Elaeis oleifera (Kunth) Cortés

T/H

Geonoma interrupta (Ruiz & Pav.) Mart.

T/H

Aristolochiaceae

 

Aristolochia sp.EN

T/L

Asparagaceae

 

Cordyline fruticosa (L.) A. ChevIN.

T/H

Dracaena americana Donn. Sm. IN

T/H

Yucca guatemalensis BakerIN

T/H

Asteraceae

 

Baccharis trinervis Pers.

T/H

Calea jamaicensis (L.) L.

T/Ar

Elephantopus mollis Kunth

T/H

Lasianthea fruticosa K.M. Becker

T/Ar

Mikania guaco Bonpl.

T/L

Neurolaena lobata (L.) Cass.

T/Ar

Verbesina turbacensis Kunth

T/Ar

Vernonia patens Kunth

T/Ar

Begoniaceae

 

Begonia multinervia Liebm.

T/H

Bignoniaceae

 

Crescentia cujete L.

T/A

Cydista aequinoctialis (L.) Miers

Ep/L

Cydista potosina (K. Schum. & Loes.) Loes.

T/L

Jacaranda caucana Pittier

T/A

Lundia corymbifera (Vahl) Sandwith

T/L

Spathodea campanulata P. Beauv.

T/A

Handroanthus impetiginosus (Mart. ex DC.) Standl.

T/A

Handroanthus ochraceus (Cham.) Standl.

T/A

Tabebuia rosea (Bertol.) DC.

T/A

Bixaceae

 

Cochlospermum vitifolium (Willd.) Spreng.

T/A

Boraginaceae

 

Cordia alliodora (Ruiz & Pav.) Oken

T/A

Cordia panamensis L. Riley

T/A

Tournefortia hirsutissima L.

T/Ar

Bromeliaceae

 

Aechmea dactylina Baker

Ep/H

Aechmea magdalenae (André) André ex Baker

T/H

Bromelia plumieri (E. Morren) L.B. Sm.

Ep/Ar

Pitcairnia halophila L. B. Sm.ENB

T/H

Tillandsia brachycaulos Schltdl.

Ep/Ar

Burseraceae

 

Bursera simaruba (L.) Sarg.

T/A

Protium ravenii D.M. Porter

T/A

Protium pittieri (Rose) Engl.

T/A

Calophyllaceae

 

Calophyllum brasiliense Cambess.

T/A

Cannabaceae

 

Celtis iguanaea (Jacq.) Sarg.

T/L

Trema integerrima (Beurl.) Standl.

T/A

Capparaceae

 

Capparis frondosa Jacq.

T/Ar

Caryocaraceae

 

Caryocar costaricense Donn. Sm.

T/A

Chrysobalanaceae

 

Licania platypus (Hemsl.) Fritsch

T/A

Combretaceae

 

Combretum decandrum Jacq.

T/L

Terminalia amazonia (J.F. Gmel.) Exell

T/A

Connaraceae

 

Cnestidium rufescens Planch.

T/L

Costaceae

 

Costus guanaiensis Rusby

T/Ar

Cucurbitaceae

 

Psiguria warscewiczii (Hook. f.) Wunderlin

Ep/L

Cyclanthaceae

 

Carludovica rotundifolia H. Wendl. ex Hook. f.

T/H

Cyperaceae

 

Cyperus luzulae (L.) Rottb. ex Retz.

T/H

Rhynchospora corymbosa (L.) Britton

T/H

Rhynchospora nervosa (Vahl) Boeckeler

T/H

Dilleniaceae

 

Curatella americana L.

T/A

Davilla kunthii A. St.-Hil.

T/L

Elaeocarpaceae

 

Sloanea terniflora (DC.) Standl.

T/Ar

Erythroxylaceae

 

Erythroxylum havanense Jacq.

T/Ar

Euphorbiaceae

 

Acalypha macrostachya Jacq.

T/Ar

Cnidoscolus megacanthus Breckon

T/Ar

Codiaeum variegatum (L.) Rumph. ex A. Juss.IN

T/Ar

Croton schiedeanus Schltdl.

T/A

Hura crepitans L.

T/A

Mabea occidentalis Benth.

T/Ar

Fabaceae

 

Albizia adinocephala (Donn. Sm.) Britton & Rose ex Record

T/A

Albizia guachapele (Kunth) Dugand

T/A

Albizia guachapele (Kunth) Dugand

T/A

Andira inermis (W. Wright) Kunth ex DC.

T/A

Bauhinia ungulata L.

T/Ar

Cassia grandis L. f.

T/A

Cassia moschata Kunth

T/A

Copaifera aromatica Dwyer

T/A

Diphysa americana (Mill.) M. Sousa

T/A

Entada polystachya (L.) DC.

T/L

Enterolobium cyclocarpum (Jacq.) Griseb.

T/A

Gliricidia sepium (Jacq.) Kunth ex Walp.

T/A

Hymenaea courbaril L.

T/A

Inga jimenezii N. ZamoraENB

T/A

Inga punctata Willd.

T/A

Leptolobium panamense (Benth.) Yakovlev

T/A

Lonchocarpus minimiflorus Donn. Sm.

T/A

Machaerium microphyllum (E. Mey.) Standl.

T/L

Machaerium milleflorum Pittier

T/L

Machaerium pittieri J.F. Macbr.

T/L

Machaerium salvadorense (Donn. Sm.) Rudd

T/L

Machaerium seemannii Benth. ex Seem.

T/L

Mimosa pudica L.

T/H

Mucuna mutisiana (Kunth) DC.

T/L

Platymiscium pinnatum (Jacq.) Dugand

T/A

Pterocarpus officinalis Jacq.

T/A

Schizolobium parahyba (Vell.) S.F. Blake

T/A

Senna papillosa (Britton & Rose) H.S. Irwin & Barneby

T/A

Senna reticulata (Willd.) H.S. Irwin & Barneby

T/A

Senna spectabilis (DC.) H.S. Irwin & Barneby

T/A

Swartzia simplex (Sw.) Spreng.

T/A

Zygia longifolia (Humb. & Bonpl. ex Willd.) Britton & Rose

T/A

Gesneriaceae

 

Codonanthe macradenia Donn. Sm.

T/H

Koellikeria erinoides (DC.) Mansf.

T/H

Kohleria allenii Standl. & L.O. Williams

T/H

Haemodoraceae

 

Xiphidium caeruleum Aubl.

T/H

Heliconiaceae

 

Heliconia longiflora R. R. Sm.

T/H

Heliconia mariae Hook. f.

T/H

Heliconia tortuosa Griggs

T/H

Hypericacea

 

Vismia baccifera Kunth

T/A

Iridaceae

 

Cipura campanulata Ravenna

T/H

Lamiaceae

 

Hyptis suaveolens (L.) Poit.

T/Ar

Ocimum campechianum Mill.

T/Ar

Lauraceae

 

Nectandra membranacea (Sw.) Griseb.

T/A

Ocotea veraguensis (Meisn.) Mez

T/A

Persea caerulea (Ruiz & Pav.) Mez

T/A

Lythraceae

 

Lafoensia punicifolia DC.

T/A

Malpighiaceae

 

Byrsonima crassifolia (L.) Kunth

T/A

Heteropterys laurifolia (L.) A. Juss.

T/L

Malvaceae

 

Apeiba tibourbou Aubl.

T/A

Bernoullia flammea Oliv.

T/A

Pachira sessilis (Benth.) Pittier

T/A

Byttneria aculeata (Jacq.) Jacq.

Ep/L

Ceiba pentandra (L.) Gaertn.

T/A

Guazuma ulmifolia Lam.

T/A

Luehea speciosa Willd.

T/A

Malachra alceifolia Jacq.

T/Ar

Melochia nodiflora Sw.

T/H

Ochroma pyramidale (Cav. ex Lam.) Urb.

T/A

Pseudobombax septenatum (Jacq.) Dugand

T/A

Quararibea asterolepis Pittier

T/A

Sida ulmifolia Mill.

T/Ar

Triumfetta lappula L.

T/Ar

Waltheria glomerata C. Presl

T/Ar

Marantaceae

 

Calathea lutea (Aubl.) Schult.

T/H

Stromanthe palustris H. Kenn.

T/H

Melastomataceae

 

Conostegia subcrustulata (Beurl.) Triana

T/Ar

Miconia argentea (Sw.) DC.

T/A

Miconia impetiolaris (Sw.) D. Don ex DC.

T/Ar

Schwackaea cupheoides (Benth.) Cogn.

T/H

Meliaceae

 

Cedrela odorata L.

T/A

Guarea sp.

T/A

Swietenia macrophylla King

T/A

Trichilia americana (Sessé & Moc.) T.D. Penn.

T/A

Trichilia martiana C. DC.

T/A

Trichilia pleeana (A. Juss.) C. DC.

T/A

Menispermaceae

Cissampelos pareira L.

T/L

Moraceae

 

Brosimum costaricanum Liebm.

T/A

Brosimum alicastrum Sw.

T/A

Castilla tunu Hemsl.

T/A

Clarisia biflora Ruiz & Pav.

T/A

Ficus costaricana (Liebm.) Miq.

T/A

Ficus americana Aubl.

Ep/A

Ficus benjamina L.IN

T/A

Ficus insipida Willd.

T/A

Ficus tonduzii Standl.

T/A

Maclura tinctoria (L.) D. Don ex Steud.

T/A

Olmedia aspera Ruiz & Pav.

T/A

Pseudolmedia glabrata (Liebm.) C. C. Berg

T/A

Trophis racemosa (L.) Urb.

T/A

Trophis caucana (Pittier) C.C. Berg

T/A

Myrtaceae

 

Eugenia acapulcensis Steud.

T/A

Eugenia veraguensis R. Flores & A. IbáñezENB

T/Ar

Calycolpus warszewiczianus O. Berg

T/Ar

Psidium friedrichsthalianum (O. Berg) Nied.

T/A

Psidium guajava L.

T/A

Psidium guineense Sw.

T/Ar

Syzygium jambos (L.) AlstonINN

T/A

Syzygium malaccense (L.) Merr. & L.M. PerryINN

T/A

Nyctaginaceae

 

Guapira costaricana (Standl.) Woodson

T/A

Ochnaceae

 

Ouratea lucens (Kunth) Engl.

T/Ar

Olacaceae

 

Chaunochiton kappleri (Sagot ex Engl.) Ducke

T/A

Heisteria coccinea Jacq.

T/A

Orchidaceae

 

Bletia purpurea (Lam.) DC.

T/H

Epidendrum vulgoamparoanum Hágsater & L. SánchezENB

Ep/H

Notylia barkeri Lindl.

Ep/H

Oeceoclades maculata (Lindl.) Lindl.

T/H

Palmorchis powellii (Ames) C. Schweinf. & Correll

T/H

Trigonidium egertonianum Bateman ex Lindl.

Ep/H

Vanilla planifolia Andrews

Ep/L

Vanilla pompona Schiede

H-ep/H

Passifloraceae

 

Passiflora coriacea Juss.

Ep/L

Peraceae

 

Pera oppositifolia Griseb.

T/A

Piperaceae

 

Peperomia cyclophylla Miq.

Ep/H

Piper friedrichsthalii C. DC.

T/Ar

Piper umbellatum L.

T/Ar

Piper xanthostachyum C. DC.

T/Ar

Scrophulariaceae

 

Russelia sarmentosa Jacq.

T/H

Poaceae

 

Andropogon bicornis L.

T/H

Hyparrhenia rufa (Nees) Stapf IN

T/H

Oplismenus burmannii (Retz.) P. Beauv.

T/H

Rottboellia cochinchinensis (Lour.) Clayton

T/H

Sporobolus indicus (L.) R. Br.

T/H

Polygalaceae

 

Coccoloba guanacastensis W.C. BurgerENB

T/A

Persicaria acuminata (Kunth) M. Gómez

Ac/H

Securidaca diversifolia (L.) S.F. Blake

T/L

Triplaris melaenodendron (Bertol.) Standl. & Steyerm.

T/A

Primulaceae

 

Ardisia revoluta Kunth

T/A

Proteaceae

 

Roupala montana Aubl.

T/A

Rhamnaceae

 

Gouania lupuloides (L.) Urb.

T/L

Rubiaceae

 

Alibertia edulis (Rich.) A. Rich. ex DC.

T/Ar

Calycophyllum candidissimum (Vahl) DC.

T/A

Faramea occidentalis (L.) A. Rich.

T/Ar

Genipa americana L.

T/A

Geophila repens (L.) I.M. Johnst.

T/H

Hamelia magnifolia Wernham

T/Ar

Macrocnemum roseum

T/A

Palicourea triphylla DC.

T/Ar

Palicourea guianensis Aubl.

T/Ar

Pentagonia tinajita Seem.

T/Ar

Psychotria sp.

T/A

Randia aculeata L.

T/Ar

Tocoyena pittieri (Standl.) Standl.

T/A

Warszewiczia coccinea (Vahl) Klotzsch

T/A

Salicaceae

 

Casearia arguta Kunth

T/Ar

Casearia arborea (Rich.) Urb.

T/A

Prockia crucis P. Browne ex L.

T/Ar

Xylosma flexuosa (Kunth) Hemsl.

T/Ar

Zuelania guidonia (Sw.) Britton & Millsp.

T/A

Salviniaceae

 

Salvinia minima Baker

Ac/H

Sapindaceae

 

Cupania cinerea Poepp.

T/A

Dilodendron elegans (Radlk.) A.H. Gentry & Steyerm.

T/A

Melicoccus bijugatus Jacq.

T/Ar

Paullinia turbacensis Kunth

Ep/L

Paullinia costaricensis Radlk.

T/L

Paullinia cururu L.

T/L

Serjania racemosa Schumach.

Ep/L

Talisia nervosa Radlk.

T/A

Sapotaceae

 

Chrysophyllum cainito L.

T/A

Siparunaceae

 

Siparuna guianensis Aubl.

T/Ar

Solanaceae

 

Acnistus arborescens (L.) Schltdl.

T/A

Cestrum nocturnum L.

T/Ar

Urticaceae

 

Cecropia peltata L.

T/A

Coussapoa villosa Poepp. & Endl.

Ep/Ar

Verbenaceae

Lantana camara L.

T/Ar

Ximeniaceae

 

Ximenia americana L.

T/Ar


1 Programa de Posgrado en Biología / Herbario Luis Fournier Origgi (USJ), Universidad de Costa Rica, Costa Rica. marcovf.09@gmail.com, https://orcid.org/0000-0003-0119-0427

2 Campus Tecnológico Local San Carlos, Tecnológico de Costa Rica, Costa Rica. jm10sc@hotmail.com, https://orcid.org/0000-0001-7918-8664

3 Institute for Environmental Sciences, University of Geneva, Suiza y Escuela de Geografía, Universidad de Costa Rica, Costa Rica. adolfo.quesada@gmail.com, https://orcid.org/0000-0002-7911-9228

4 Facultad de Ciencias Naturales y Exactas, Escuela de Biología, Universidad Autónoma de Chiriquí, Panamá. rflores1184@hotmail.com, https://orcid.org/0000-0002-7911-9228


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