Crecimiento y rendimiento en filete de Lobotes pacificus (Perciformes: Lobotidae) en sistemas recirculados, una especie con potencial en acuicultura

  • Jonathan Chacón-Guzmán Programa Parque Marino del Pacífico, Escuela de Ciencias Biológicas, Universidad Nacional (UNA), Heredia, Costa Rica. Laboratorio de Investigación y Desarrollo en Acuicultura y Biotecnología Marina, Parque Marino del Pacífico, Puntarenas, Costa Rica.
  • Milagro Carvajal-Oses Programa Parque Marino del Pacífico, Escuela de Ciencias Biológicas, Universidad Nacional (UNA), Heredia, Costa Rica. Laboratorio de Investigación y Desarrollo en Acuicultura y Biotecnología Marina, Parque Marino del Pacífico, Puntarenas, Costa Rica.
  • Angel Herrera-Ulloa Programa Parque Marino del Pacífico, Escuela de Ciencias Biológicas, Universidad Nacional (UNA), Heredia, Costa Rica. Laboratorio de Investigación y Desarrollo en Acuicultura y Biotecnología Marina, Parque Marino del Pacífico, Puntarenas, Costa Rica.
  • Pedro Toledo- Agüero Departamento de Acuicultura, Facultad de Ciencias del Mar, Universidad Católica del Norte, Coquimbo, Chile.
Palabras clave: Triplecola, juveniles, peso, comercio, cultivo

Resumen

El género Lobotes se extiende por las zonas tropicales y subtropicales de océanos como el Atlántico y Pacífico; se extrae de manera artesanal y su tecnología de producción acuícola aún está en investigación. El objetivo del presente trabajo fue evaluar el crecimiento del cuerpo y el rendimiento del filete en L. pacificus en sistemas recirculados. En el 2014 y durante 100 días se colocaron 132 juveniles en seis tanques de 10 m3 (22 / tanque), D1 (rango 5-13 g, x̄ = 8.8 ± 1.9 g, n = 66) y D2 (rango 14-80 g, x̄ = 44.7 ± 16.4 g, n = 66). Se alimentaron a saciedad, D1 con alimento artificial y D2 con sardinas. Se calculó la relación longitud peso para cada grupo. Se obtuvo un peso final para D1 de 47.7 ± 20.3 g., mientras que para D2 fue de 612.2 ± 238.7 g. Se alcanzó una supervivencia para D1 de 98.3%; y para D2 fue de 72.7%. Los rendimientos de pescado entero y filete se consideran aceptables en el grupo D2 (pescado eviscerado total 89.0 ± 0.5% y filete sin piel 36.1 ± 0.6%). Después de 100 días de cultivos esta especie alcanzó mayores tamaños comerciales que otros peces similares, sin embargo, no es recomendable la utilización de sardinas como único alimento. Este estudio demostró que L. pacificus tiene un alto potencial de rendimiento para el cultivo.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Citas

Álvarez-González, C., Civera-Cerecedo, R., Ortiz-Galindo, J., Dumas, S., Moreno-Legorreta, M. & Grayeb Del Alamo, T. (2001). Effect of dietary protein level on growth and body composition of juvenile spotted sand bass, Paralabrax maculatofasciatus, fed practical diets. Aquaculture, 194(1), 151-159. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(00)00512-3
Arias, A., Pereira, D., Senior, A. & Tellez C. (2007). Pesca y Acuicultura Colombia. Bogotá, Colombia: Corporación Colombia Internacional.
Asamblea Legislativa de la República de Costa Rica. (1994). Ley de Bienestar de los Animales. Ley 7451. (Published in the Official Gazette N° 236, November 11). San José, Costa Rica: Imprenta Nacional.
Bagenal, T. (1978). Methods for assessment of fish production in fresh waters. New York, USA: Blackwell Scientific Publications.
Banguera-Gil, E. & Ángulo-Sinisterra, J. (2010). Crecimiento en jaulas del pargo lunarejo Lutjanus guttatus (Steindachner, 1869) con dos tipos de dieta en Bahía Málaga, municipio de Buenaventura, Colombia. Entramado, 12, 12-23.
Benetti, D., O'Hanlon, B., Rivera, J., Welch, A., Maxey, C. & Orhun, M. (2010). Growth rates of cobia (Rachycentron canadum) cultured in open ocean submerged cages in the Caribbean. Aquaculture, 302(3), 195-201. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2010.02.021
Benitez-Hernández, A., Jiménez-Bárcenas, S. & Sánchez-Gutiérrez, E. (2017). Use of marine by-product meals in diets for juvenile longfin yellowtail Seriola rivoliana. Aquac. Nutr. 24(1), 562-570. https://doi.org/10.1111/anu.12588
Blancheton, J. (2000). Developments in recirculation systems for Mediterranean fish species. Aquacult. Eng., 22(1), 17-31. https://doi.org/10.1016/S0144-8609(00)00030-3
Botero, J. & Ospina, J. (2002). Crecimiento de juveniles de pargo palmero Lutjanus analis (Cuvier) en jaulas flotantes en islas del rosario, Caribe Colombiano. Bol. Investig. Mar. Cos., 31, 205-217.
Botero, J. & Ospina, J. (2003). Crecimiento y desempeño general de juveniles silvestres de mero guasa Epinephelus itajara (Lichtenstein) mantenidos en jaulas flotantes bajo diferentes condiciones de cultivo. Bol. Investig. Mar. Cost., 32, 25-36.
Busacker, P., Adelman, R. & Goollish, M. (1990). Growth. In B. Schreck & B. P. Moyle (Eds.), Methods for Fish Biology (pp. 363-387). Maryland, USA: American fisheries.
Castillo‐Vargasmachuca, S., Ponce‐Palafox, J., Arámbul‐Muñoz, E., Rodríguez‐Domínguez, G. & Aragón‐Noriega, E. (2016). The spotted rose snapper (Lutjanus guttatus Steindachner 1869) farmed in marine cages: review of growth models. Rev. Aquacult., 10 (2), 376- 384. https://doi.org/10.1111/raq.12166
Cibert, C., Fermon, Y., Vallod, D. & Meunier, F.J. (1999). Morphological screening of carp Cyprinus carpio: relationship between morphology and fillet yield. Aquat. Living Resour., 12, 1-10. https://doi.org/10.1016/S0990-7440(99)80009-6
Di Rienzo J. A., Casanoves F., Balzarini M. G., Gonzalez L., Tablada M. & Robledo C. W. (2018). InfoStat. Buenos Aires, Argentina: Grupo InfoStat, FCA.
Do-Huu, H., Ho-Son, L. & Can-Van, N. (2018). Efficiency of Dietary β-glucan Supplementation on Growth, Body Composition, Feed, and Nutrient Utilization in Juveniles of Pompano Fish (Trachinotus ovatus, Linnaeus, 1758). The Israeli J. Aquacult., 70, 1-17.
Franks, J., Ogle, J., Hendon, J., Barnes, D. & Nicholson, L. (2001). Growth of captive juvenile tripletail Lobotes surinamensis. Gulf Caribb. Res., 13(1), 67-70. https://doi.org/10.18785/gcr.1301.07
Froese, R. (2006). Cube law, condition factor and weight-length relationships: history, meta-analysis, and recommendations. J. Appl. Ichthyol, 22, 241-253. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2006.00805.x
García-Rojas, A., Vega-Bolaños, H. & Quesada-Phillips, V. (2017). Dinámica anual de tintínidos en las aguas estuarinas de dos áreas marinas de pesca responsable en el Golfo de Nicoya, Costa Rica. Uniciencia, 31(1), 1-12.
Gutiérrez, E., Hoyum, M., Cruzata, P., Lunestad, B., Villalobos, L., Karlsen, O. & Alfonso, Y. 2016. Manejo postcosecha de la cobia de cultivo en la bahía de Cochinos. Rev. Cub. Invest. Pesq., 33(1), 72-75.
Heemstra, C. (1995). Lobotidae Dormilonas. In W. Fischer, F. Krupp, W. Schneider, C. Sommer, K.E. Carpenter & V. Niem (Eds.), Guía de las Naciones Unidas para la Alimentación (FAO) para Identificación de Especies para los Fines de la Pesca (p. 1226). Rome, Italy: FAO.
Hernández, C., Ibarra-Castro, L., Hernández, C., Quintero-Martínez, G., Aragón-Noriega, A. & Tacon, A. (2015). Growth performance of spotted rose snapper in floating cages and continuous water-flow tank systems. N. Am. J. Aquacult., 77(4), 423-428. https://doi.org/10.1080/152 2055.2015.1032458
Jobling, M. (1994). Fish Bioenergetics. London, England: Chapman & Hall.
Lea, R. N. & Rosenblatt, R. (2000). Observations on Fishes Associated with the 1997–1998. El Niño of California. Cal. Coop. Ocean. Fish, 41, 117-129.
Lea, R., Bearez, P., van der Heiden, A., Acero, A. & Cotta, A. (2010). Lobotes pacificus. Gland, Switzerland: The IUCN Red List of Threatened Species.
Leiva, A., Bonilla, D., Mojica, A. & Murcia, C. (2007). Pesca y Acuicultura Colombia. Bogotá, Colombia: Corporación Colombia Internacional.
Lima-Amancio, A., Vilar da Silva, J., Kochenborger-Fernandes, J., Kazue-Sakomura, N. & Beltrão da Cruz, G. (2014). Use of mathematical models in the study of bodily growth in GIFT strain Nile tilapia. Rev. Ciênc. Agron, 45(2), 259-266. https://doi.org/10.1590/S1806-66902014000200005
Merino, G., Piedrahita, R. & Conklin, D. 2007. The effect of fish stocking density on the growth of California halibut (Paralichthys californicus) juveniles. Aquaculture, 265(1), 176-186. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2007.01.028
Murase, A., Angulo, A., Miyazaki, Y., Bussing, W. & López, M. (2014). Marine and estuarine fish diversity in the inner Gulf of Nicoya, Pacific coast of Costa Rica, Central America. Check List, 10(6), 1401-1413
Nelson, S., Crossman, E., Espinosa-Perez, H., Findley, L., Gilbert, C., Lea, R. & Williams, J. (2004). Common and scientific names of fishes from the United States, Canada, and Mexico. Maryland, USA: American Fisheries Society.
Noga, E. (1996). Fish disease: diagnosis and treatment. North Carolina, USA: Mosby-Year Book.
Orellana, J., Waller, U. & Wecker, B. (2014). Culture of yellowtail kingfish (Seriola lalandi) in a marine recirculating aquaculture system (RAS) with artificial seawater. Aquacult. Eng., 58, 20-28. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2013.09.004
Palstra, A., Mes, D., Kusters, K., Roques, J., Flik, G., Kloet, K. & Blonk, R. (2015). Forced sustained swimming exercise at optimal speed enhances the growth of juvenile yellowtail kingfish (Seriola lalandi). Front. Physiol., 5, 506. https://doi.org/10.3389/fphys.2014.00506
Parr, R. (2001). Age, growth, and reproductive status of tripletail (Lobotes surinamensis) in the aggregation near shore Jekyll Island, GA, USA. Unpublished master's thesis, University of Georgia.
Pauly, D. (1984). Fish population dynamics in tropical waters: A manual for use with programmable calculators. Manila, Philippines: International Center for Living Aquatic Resources Management ICLARM.
Possamai, B., Zanlorenzi, D., Machado, R. C. & Fávaro, L. F. (2018). Length-weight relationships for estuarine fishes in South Brazil. J. Applied Ichthy., 35, 608-613. https://doi.org/10.1111/jai.13846
Ramírez, J. (2004). Síndromes de sostenibilidad ambiental del desarrollo en Colombia. Santiago, Chile: United Nations Publications.
Rennie, M. & Verdón, R. (2008). Development and Evaluation of Condition Indices for the Lake Whitefish. N. Am. J. Fish. Manage., 28, 1270-1293. https://doi.org/10.1577/M06-258.1
Ricker, W. (1975). Computation and interpretation of biological statistics of fish population. B. Fish. Res. Board. Can., 191, 1-382.
Sá, M., Barbieri, G. & Verani, J. (2000). Análise do comportamento de Cyprinus carpio, Prochilodus cearensis e Colossoma macropomum em experimento de policultivo, embasado nos factores de condição. Bol. Inst. Pesca, 26(2), 181-187.
Silva, F., Franco, N., Vieira, J., Tessitore, A., Oliveira, L. & Saraiva, E. (2009). Características morfométricas, rendimentos de carcaça, filé, vísceras e resíduos em tilápias do Nilo em diferentes faixas de peso. Rev. Bras. Zootecn., 38(8), 1407-1412. https://doi.org/10.1590/S1516-35982009000800003
Souza, M., Macedo-Viegas, E., Zuanon, J., Carvalho, M. & Goes, E. (2015). Processing yield and chemical composition of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) with regard to body weight. Acta Sci. Anim. Sci., 37(2), 103-108. https://doi.org/10.4025/actascianimsci. v37i2.24165
Tortonese, E. (1990). Lobotidae. In J. Quéro, J. Hureaus & C. Karrer (Eds.), Check-List of the fishes of the Eastern Tropical Atlantic. Paris, France: UNESCO.
Untergasser, D. (1989). Handbook of fish diseases. Texas, USA: Neptune City.
Vandeputte, M., Gagnaire, P. & Allal, F. (2019). The European sea bass: a key marine fish model in the wild and in aquaculture. Anim. Genet., 50(3), 195-206. https://doi.org/10.1111/age.12779
Vela, M. A., Villarreal, H., Araneda, M. & Espinosa-Faller, F. J. (2018). Growth and survival of juvenile red drum, Sciaenops ocellatus, acclimated to freshwater at three different stocking densities in a partial recirculation system. J. World Aquacult. Soc., 1, 1-17. https://doi.org/10.1111/jwas.12546
Webb, K., Hitzfelder, G., Faulk, C. & Holt, G. (2007). Growth of juvenile cobia, Rachycentron canadum, at three different densities in a recirculating aquaculture system. Aquaculture, 264(1), 223-227. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2006.12.029
Weirich, C., Wills, P., Baptiste, R., Woodward, P. & Riche, M. (2009). Production characteristics and body composition of Florida pompano reared to market size at two different densities in low-salinity recirculating aquaculture systems. N. Am. J. Aquacult. 71(2), 165-173. https://doi.org/10.1577/A08-016.1
Zemnukhov, V. & Turanov, S. (2011). First catch in Russian waters of a spinulated specimen of Lobotes surinamensis (Bloch, 1790) (Percoidei: Lobotidae) with notes on the taxonomy of this species. J. Ichthyol., 51(1), 84-89. https://doi.org/10.1134/S0032945211010164
Publicado
2019-09-12
Cómo citar
Chacón-Guzmán, J., Carvajal-Oses, M., Herrera-Ulloa, A., & Toledo- Agüero, P. (2019). Crecimiento y rendimiento en filete de Lobotes pacificus (Perciformes: Lobotidae) en sistemas recirculados, una especie con potencial en acuicultura. Revista Ciencias Marinas Y Costeras, 11(2), 129-143. https://doi.org/10.15359/revmar.11-2.7
Sección
Artigos (seção Arbitrada)